RESUMO
This study aimed to assess the suitability of egg yolk (EY) supplementation to a tris-citric acid-based extender on cryosurvival of guinea pig (Cavia porcellus) epididymal spermatozoa. Two synthetic-based extenders, tris-citric acid-glucose plus 20% EY (TCG-EY) and tris-citric acid-fructose (TCF) both with 5% glycerol, were compared. Thirty-two epididymides were recovered from 16 adult guinea pig males by gonadectomy, and then the sperm samples were retrieved by retrograde flushing using TCG-EY and TCF extenders for left or right epididymis, respectively. TCG-EY and TCF sperm samples were frozen in static liquid nitrogen vapors through a two-step cooling procedure. Before freezing, the percentage of progressive sperm motility and sperm with intact plasma and acrosome membranes from TCG-EY sperm samples were higher (p < 0.05) than those diluted with TCF. Post-thaw sperm kinematic variables and membrane integrity were drastically reduced (p < 0.001) compared with prefreezing samples, regardless of extender type. The post-thaw plasmatic and acrosome membrane integrity from TCG-EY sperm samples was higher (p < 0.05) than those from TCF samples. Except for the length, the morphometric head dimensions of sperm diluted with TCG-EY or TCF did not vary (p > 0.05) after the freezing-thawing process compared with the prefreezing samples. In conclusion, despite greater cell cryoinjury with both extenders, the EY supplementation exerted greater cell membrane protection before and after the freezing-thawing process. This research shows an in-depth analysis of guinea pig sperm cryopreservation; however, more studies are recommended.
Assuntos
Gema de Ovo , Preservação do Sêmen , Masculino , Cobaias , Animais , Suínos , Epididimo , Ácido Cítrico/farmacologia , Motilidade dos Espermatozoides , Sêmen , Espermatozoides , Criopreservação/métodos , Preservação do Sêmen/métodos , Crioprotetores/farmacologiaRESUMO
We aimed to compare fresh sperm and sperm cooled to 4ºC that had been recovered from the epididymides of cats using powdered coconut water (ACP-117c) and Tris extenders. Sixty epididymides were divided into 6 groups: 10 fresh epididymides were recovered using Tris (T0h); 10 were kept at 4°C/2h and recovered using Tris (T2h); 10 were kept at 4°C/4h and recovered using Tris (T4h); 10 fresh were recovered using ACP-117c (A0h); 10 were kept at 4°C/2h and recovered using ACP-117c (A2h), and 10 were kept at 4°C/4h and recovered using ACP-117c (A4h). The testis-epididymis complexes (TEC) control were not cooled. The others were cooled at 4°C for 2 or 4h. The epididymis was separated and the sperm was recovered by the modified flotation method. Sperm kinetic parameters were evaluated by a computer-system analysis, and vigor, viability, concentration, membrane function and morphology of the sperm were assessed under a light microscope. The progressive motility with ACP-117c declined after 2h of cooling, but did not differ between fresh and 4h. The vigor and membrane function were higher in A4h than A0h. The vigor at T2h and T4h were decreased compared to T0h. T0h was higher than A0h for vigor and sperm membrane function. However, after 4h of cooling, ACP-117c maintained a higher percentage of living cells. Feline epididymal sperm quality can be maintained to the degree necessary for artificial breeding programs following cooling and ACP-117c may be successfully used to recover cat sperm that have been cooled for up to 4h.(AU)
Objetivou-se comparar a qualidade de espermatozoides recuperados a fresco e após refrigeração a 4ºC do epidídimo de gatos domésticos utilizando-se os diluidores ACP-117c e Tris. Sessenta epidídimos foram distribuídos em seis grupos: 10 epidídimos a fresco com o Tris (T0h), 10 a 4°C/2h e recuperados com Tris (T2h), 10 a 4°C/4h e recuperados com Tris (T4h), 10 epidídimos a fresco com o ACP-117c (A0h), 10 a 4 °C/2h e recuperados com ACP-117c (A2h), 10 a 4°C/4h e recuperados com ACP-117c (A4h). Os complexos testículo-epidídimo (CTE) do controle não foram refrigerados. Os outros foram refrigerados a 4°C durante duas e quatro horas. Os epidídimos foram separados das demais estruturas, e os espermatozoides recuperados pela técnica de flutuação modificada. Os parâmetros cinéticos foram avaliados em um sistema computadorizado, e o vigor, a viabilidade, a concentração, a funcionalidade de membrana e a morfologia celular foram avaliados em microscopia de luz. A motilidade progressiva com ACP-117c declinou após duas horas de refrigeração, mas não diferiu entre a recuperação a fresco e após refrigeração por quatro horas. Vigor e integridade funcional da membrana celular foram significativamente superiores no grupo A4h em comparação ao A0h. O vigor espermático em T2h e T4h reduziu significativamente em comparação com T0h. T0h foi significativamente superior ao A0h quanto aos parâmetros de vigor e integridade funcional da membrana espermática, entretanto, após quatro horas de refrigeração, o ACP-117c apresentou um maior percentual de células vivas. Os espermatozoides epididimários de felinos domésticos conseguem manter a qualidade necessária para serem utilizados em programas de reprodução artificial após serem refrigerados e recuperados por meio da técnica de flutuação modificada, e o diluidor ACP-117c pode ser utilizado com sucesso para recuperação de células espermáticas refrigeradas de gatos por até quatro horas.(AU)
Assuntos
Animais , Masculino , Gatos , Refrigeração/veterinária , Técnicas de Reprodução Assistida/veterinária , Espermatozoides/citologia , Epididimo , Alimentos de CocoRESUMO
We aimed to compare fresh sperm and sperm cooled to 4ºC that had been recovered from the epididymides of cats using powdered coconut water (ACP-117c) and Tris extenders. Sixty epididymides were divided into 6 groups: 10 fresh epididymides were recovered using Tris (T0h); 10 were kept at 4°C/2h and recovered using Tris (T2h); 10 were kept at 4°C/4h and recovered using Tris (T4h); 10 fresh were recovered using ACP-117c (A0h); 10 were kept at 4°C/2h and recovered using ACP-117c (A2h), and 10 were kept at 4°C/4h and recovered using ACP-117c (A4h). The testis-epididymis complexes (TEC) control were not cooled. The others were cooled at 4°C for 2 or 4h. The epididymis was separated and the sperm was recovered by the modified flotation method. Sperm kinetic parameters were evaluated by a computer-system analysis, and vigor, viability, concentration, membrane function and morphology of the sperm were assessed under a light microscope. The progressive motility with ACP-117c declined after 2h of cooling, but did not differ between fresh and 4h. The vigor and membrane function were higher in A4h than A0h. The vigor at T2h and T4h were decreased compared to T0h. T0h was higher than A0h for vigor and sperm membrane function. However, after 4h of cooling, ACP-117c maintained a higher percentage of living cells. Feline epididymal sperm quality can be maintained to the degree necessary for artificial breeding programs following cooling and ACP-117c may be successfully used to recover cat sperm that have been cooled for up to 4h.(AU)
Objetivou-se comparar a qualidade de espermatozoides recuperados a fresco e após refrigeração a 4ºC do epidídimo de gatos domésticos utilizando-se os diluidores ACP-117c e Tris. Sessenta epidídimos foram distribuídos em seis grupos: 10 epidídimos a fresco com o Tris (T0h), 10 a 4°C/2h e recuperados com Tris (T2h), 10 a 4°C/4h e recuperados com Tris (T4h), 10 epidídimos a fresco com o ACP-117c (A0h), 10 a 4 °C/2h e recuperados com ACP-117c (A2h), 10 a 4°C/4h e recuperados com ACP-117c (A4h). Os complexos testículo-epidídimo (CTE) do controle não foram refrigerados. Os outros foram refrigerados a 4°C durante duas e quatro horas. Os epidídimos foram separados das demais estruturas, e os espermatozoides recuperados pela técnica de flutuação modificada. Os parâmetros cinéticos foram avaliados em um sistema computadorizado, e o vigor, a viabilidade, a concentração, a funcionalidade de membrana e a morfologia celular foram avaliados em microscopia de luz. A motilidade progressiva com ACP-117c declinou após duas horas de refrigeração, mas não diferiu entre a recuperação a fresco e após refrigeração por quatro horas. Vigor e integridade funcional da membrana celular foram significativamente superiores no grupo A4h em comparação ao A0h. O vigor espermático em T2h e T4h reduziu significativamente em comparação com T0h. T0h foi significativamente superior ao A0h quanto aos parâmetros de vigor e integridade funcional da membrana espermática, entretanto, após quatro horas de refrigeração, o ACP-117c apresentou um maior percentual de células vivas. Os espermatozoides epididimários de felinos domésticos conseguem manter a qualidade necessária para serem utilizados em programas de reprodução artificial após serem refrigerados e recuperados por meio da técnica de flutuação modificada, e o diluidor ACP-117c pode ser utilizado com sucesso para recuperação de células espermáticas refrigeradas de gatos por até quatro horas.(AU)
Assuntos
Animais , Masculino , Gatos , Gatos , Espermatozoides/citologia , Técnicas de Reprodução Assistida/veterinária , Refrigeração/veterinária , EpididimoRESUMO
Two experiments were conducted to study the effect of shortening the equilibration time with the cryoprotectant glycerol before freezing epididymal sperm recovered postmortem from Iberian ibex. In the first experiment, the standard equilibration time of 3 hours was compared with 2 hours, and subjective sperm motility and quality of movement were greater (P < 0.05) in the latter group. In the second experiment, reducing the equilibration time from 2 hours to 15 minutes did not affect sperm motility (evaluated subjectively and objectively), viability, acrosomal integrity, or membrane functional integrity. In conclusion, shortening the equilibration time can be used as a technique to simplify the cryopreservation process and this provides practical advantages under field conditions.
Assuntos
Criopreservação/veterinária , Epididimo/citologia , Glicerol , Cabras/fisiologia , Preservação do Sêmen/veterinária , Espermatozoides/fisiologia , Animais , Criopreservação/métodos , Masculino , Preservação do Sêmen/métodos , Motilidade dos Espermatozoides , Fatores de TempoRESUMO
After a serious injury or sudden death, epididymis cauda sperm recovery and cryopreservation may present as the last opportunity to obtain genetic material from a valuable stallion. This study evaluated the viability of cooled equine sperm collected by three different methods: sperm of ejaculated (G1), sperm recovered from the epididymal cauda immediately after orchiectomy (G2) and sperm recovered from the epididymal cauda after storage for 24 hours at 5°C (G3). To obtain G1 sperm, two ejaculates were collected. After 1 week, all stallions underwent a bilateral orchiectomy, and one of the removed epididymides was flushed to obtain G2 sperm. The contralateral epididymis was stored at 5°C for 24 hours before being flushed to obtain G3 sperm. The sperm samples were evaluated immediately after the addition of the refrigeration extender, and after 24 and 48 hours of storage at 5°C. After 24 and 48 hours of storage, the epididymal sperm demonstrated higher motility traits when compared to the ejaculated sperm (P<0.05). These results indicate that sperm recovered from the epididymal cauda of stallions are more resistant to the cooling process, with higher kinetic parameters and plasma membrane integrity when compared to the ejaculated sperm.
A recuperação de espermatozoides da cauda do epidídimo pode ser a última chance para preservação do germoplasma quando ocorre morte súbita ou lesão grave em garanhões de alto valor genético. O presente trabalho comparou a viabilidade após refrigeração dos espermatozoides do ejaculado (G1), recuperados da cauda do epidídimo imediatamente após a orquiectomia (G2) e recuperados após armazenamento do epidídimo por 24 horas a 5ºC (G3). No G1 foram colhidos dois ejaculados. Uma semana após a colheita dos ejaculados os garanhões foram submetidos à orquiectomia bilateral e realizada a colheita dos espermatozoides da cauda do epidídimo de um testículo de cada garanhão (G2). O testículo contralateral permaneceu a 5°C por 24 horas, antes da recuperação espermática (G3). A análise das amostras foi realizada imediatamente após a adição do meio de refrigeração, e após 24 e 48 horas de armazenamento a 5°C. Após 24 e 48 horas de armazenamento, os espermatozoides do epidídimo demonstraram características de cinética maiores que os do ejaculado (P<0.05). Estes resultados indicam que espermatozoides recuperados da cauda do epidídimo foram mais resistentes ao processo de refrigeração, com maiores parâmetros de cinética espermática e integridade da membrana plasmática quando comparados aos espermatozoides do ejaculado.
Assuntos
Animais , Criopreservação/instrumentação , Epididimo/anatomia & histologia , Preservação do Sêmen/métodos , Espermatozoides , Cavalos/classificação , Orquiectomia/métodosRESUMO
After a serious injury or sudden death, epididymis cauda sperm recovery and cryopreservation may present as the last opportunity to obtain genetic material from a valuable stallion. This study evaluated the viability of cooled equine sperm collected by three different methods: sperm of ejaculated (G1), sperm recovered from the epididymal cauda immediately after orchiectomy (G2) and sperm recovered from the epididymal cauda after storage for 24 hours at 5°C (G3). To obtain G1 sperm, two ejaculates were collected. After 1 week, all stallions underwent a bilateral orchiectomy, and one of the removed epididymides was flushed to obtain G2 sperm. The contralateral epididymis was stored at 5°C for 24 hours before being flushed to obtain G3 sperm. The sperm samples were evaluated immediately after the addition of the refrigeration extender, and after 24 and 48 hours of storage at 5°C. After 24 and 48 hours of storage, the epididymal sperm demonstrated higher motility traits when compared to the ejaculated sperm (P<0.05). These results indicate that sperm recovered from the epididymal cauda of stallions are more resistant to the cooling process, with higher kinetic parameters and plasma membrane integrity when compared to the ejaculated sperm.(AU)
A recuperação de espermatozoides da cauda do epidídimo pode ser a última chance para preservação do germoplasma quando ocorre morte súbita ou lesão grave em garanhões de alto valor genético. O presente trabalho comparou a viabilidade após refrigeração dos espermatozoides do ejaculado (G1), recuperados da cauda do epidídimo imediatamente após a orquiectomia (G2) e recuperados após armazenamento do epidídimo por 24 horas a 5ºC (G3). No G1 foram colhidos dois ejaculados. Uma semana após a colheita dos ejaculados os garanhões foram submetidos à orquiectomia bilateral e realizada a colheita dos espermatozoides da cauda do epidídimo de um testículo de cada garanhão (G2). O testículo contralateral permaneceu a 5°C por 24 horas, antes da recuperação espermática (G3). A análise das amostras foi realizada imediatamente após a adição do meio de refrigeração, e após 24 e 48 horas de armazenamento a 5°C. Após 24 e 48 horas de armazenamento, os espermatozoides do epidídimo demonstraram características de cinética maiores que os do ejaculado (P<0.05). Estes resultados indicam que espermatozoides recuperados da cauda do epidídimo foram mais resistentes ao processo de refrigeração, com maiores parâmetros de cinética espermática e integridade da membrana plasmática quando comparados aos espermatozoides do ejaculado.(AU)
Assuntos
Animais , Criopreservação/instrumentação , Espermatozoides , Epididimo/anatomia & histologia , Preservação do Sêmen/métodos , Cavalos/classificação , Orquiectomia/métodosRESUMO
Strategies to preserve fertility in dogs and cats as cryopreservation of epididymal spermatozoa, oocytes and ovarian tissue will be discussed in this review. Recent results indicate that significant progress have been achieved, but optimal freezing protocols have not been defined yet. The extreme sensitivity of sperm membranes and of oocyte and ovarian tissue structure deserves further investigations aimed at protecting male and female gametes from freezing injuries.
Estratégias para preservar a fertilidade em cães e gatos, como a criopreservação de esperma do epidídimo, ovócitos e tecido ovariano serão discutidos nesta revisão. Resultados recentes indicam que progresso significativo tem sido alcançado, mas protocolos ótimos de congelamento ainda não foram definidos. A sensibilidade extrema de membranas do esperma e estrutura do tecido ovariano e de ovócitos merece investigação futura com o objetivo de proteger gametas macho e fêmea de danos no congelamento.
Assuntos
Gatos , Cães , Criopreservação/métodos , Fertilidade/fisiologia , Oócitos/fisiologia , Sêmen/metabolismoRESUMO
Strategies to preserve fertility in dogs and cats as cryopreservation of epididymal spermatozoa, oocytes and ovarian tissue will be discussed in this review. Recent results indicate that significant progress have been achieved, but optimal freezing protocols have not been defined yet. The extreme sensitivity of sperm membranes and of oocyte and ovarian tissue structure deserves further investigations aimed at protecting male and female gametes from freezing injuries. (AU)
Estratégias para preservar a fertilidade em cães e gatos, como a criopreservação de esperma do epidídimo, ovócitos e tecido ovariano serão discutidos nesta revisão. Resultados recentes indicam que progresso significativo tem sido alcançado, mas protocolos ótimos de congelamento ainda não foram definidos. A sensibilidade extrema de membranas do esperma e estrutura do tecido ovariano e de ovócitos merece investigação futura com o objetivo de proteger gametas macho e fêmea de danos no congelamento. (AU)